Era nadużywania antybiotyków oraz sterydów jest jednym z najważniejszych czynników predysponujących do infekcji, ale grzybica może również pojawić się jako następstwo poważnych chorób obniżających działanie układu immunologicznego.
Dowiedz się więcej o naszych badaniach, aby trafnie zdiagnozować pacjenta.
DIAGNOSTYKA MYKOLOGICZNA
Najbardziej przydatny w diagnostyce jest materiał pobrany przed podaniem leków, zwłaszcza o działaniu miejscowym. Jeżeli już wdrożono leczenie, materiał należy pobrać przed podaniem kolejnej dawki, gdy stężenie leku jest najniższe.
Do wymazu zalecane jest dodatkowe dołączenie preparatu bezpośredniego na szkiełku podstawowym, w celu oceny pod kątem obecności grzybów drożdżopodobnych (informacja dodatkowo uwzględniona jest na wyniku).
Materiał pochodzący z próbek z części ciała, które nie są jałowe, np. moczu, kału, popłuczyn TTW czy BAL należy przechowywać w temperaturze 4 – 8 °C aby zapobiec namnażaniu grzybów w próbce. Materiał powinien zostać opracowany w laboratorium w ciągu 24 godzin od pobrania.
Materiał należy pobrać na granicy zmian. Nie powinno się pobierać włosów / sierści z centrum, gdyż tam najszybciej postępują procesy odbudowy zdrowego włosa oraz znajdują się martwe komórki grzyba. Materiały do badań na dermatofity pobiera się od pacjentów przed rozpoczęciem terapii przeciwgrzybiczej lub po upływie co najmniej 4 tygodni od momentu zakończenia leczenia. W przypadku stosowania leków przeciwgrzybiczych o działaniu ogólnym, należy wziąć pod uwagę czas, który jest konieczny do eliminacji leku z organizmu i zależy od farmakokinetyki określonego preparatu.
Pobrany materiał należy umieścić w jałowym, suchym pojemniku, tak aby zapobiec kontaminacji drobnoustrojami / grzybami środowiskowymi.
Zalecamy przechowywać w temperaturze pokojowej i dostarczyć do laboratorium w ciągu maksymalnie 48 h.
| Hodowla | PCR |
| Wykrywa wyłącznie żywe dermatofity – zalecane do kontroli leczenia. | Wykrywa również martwe dermatofity. |
| Wzrost dermatofitów może być hamowany wzrostem grzybów pleśniowych. | Wyższa czułość (brak wpływu pleśni na wynik badania). |
| Możliwość wykrycia rzadkich gatunków dermatofitów. | Wykrywa najważniejsze gatunki (Trichophyton spp., Microsporum canis, Nannizia gypsea). |
| Niższy koszt, ale dłuższy czas oczekiwania na wynik (10-21 dni). | Wyższy koszt, ale wynik w ciągu 3 – 7 dni. |
Dermatofity takie jak np. Microsporum spp, Trichophyton to keratynofilne grzyby strzępkowe, które charakteryzują się m.in. powolnym tempem wzrostu. Pomimo stosowania podłóż hodowlanych, które mają za zadanie zahamowanie wzrostu pleśni, dalej istnieje możliwość uzyskania mieszanego wzrostu grzybów innych niż dermatofity. Taki wzrost wskazuję na kontaminację, w przypadku której może nie być możliwości potwierdzenia lub wykluczenia obecności w próbce grzybów patogennych metodą hodowlaną.
Materiał do badania należy pobrać z tego samego miejsca na dwa jałowe i zwilżone solą fizjologiczną wymazy, z czego jeden umieścić w podłożu transportowym a drugi przesłać bez podłoża.
Należy mieć na uwadze, że grzyby pleśniowe są szeroko rozpowszechnione w środowisku, dlatego też w przypadku hodowli nietypowych grzybów pleśniowych (innych niż Aspergillus), zaleca się powtórzenie badań w celu eliminacji przypadkowej mykobioty i potwierdzenie ewentualnego czynnika etiologicznego.
Popłuczyn z dróg oddechowych należy przechowywać w temperaturze 4 – 8° C aby zapobiec namnażaniu grzybów w próbce. Materiał powinien zostać opracowany w ciągu 24 godzin od pobrania.
W ramach wykonywanego profilu, uwzględniane są zarówno grzyby pleśniowe, dermatofity oraz grzyby drożdżopodobne. Bardzo ważne jest aby do badania dostarczyć wystarczającą ilość materiału, pozwalającą na założenie hodowli w kierunku wymienionych grzybów. Należy mieć na uwadze, że wilgotne środowisko w którym żyją zwierzęta, sprawia, że grzyby izolowane również są od osobników bez objawów klinicznych, w szczególności dotyczy to grzybów z rodzaju Aspergillus, Penicillium, Rhizopus, Mucor, Trichosporon, Rhodotorula, Candida.
Należy zwrócić uwagę, że niektóre grzyby izolowane od gadów, mogą wymagać dodatkowej identyfikacji w postaci sekwencjonowania, dlatego też czas oczekiwania w przypadku np. podejrzenia Nannizzopsis guarroi / vriesii może ulec wydłużeniu.
Metarhizium spp (PCR)
Materiał: wymaz bogatokomórkowy
Nannizziopsis quarroi (PCR)
Materiał: wymaz bogatokomórkowy ze skóry lub narządy
Ophidiomyces ophiodiicola (węże)(PCR)
Materiał: wymaz bogatokomórkowy lub wycinek skóry
DIAGNOSTYKA MYKOLOGICZNA
Najbardziej przydatny w diagnostyce jest materiał pobrany przed podaniem leków, zwłaszcza o działaniu miejscowym. Jeżeli już wdrożono leczenie, materiał należy pobrać przed podaniem kolejnej dawki, gdy stężenie leku jest najniższe.
Materiał pochodzący z próbek z części ciała, które nie są jałowe, np. moczu, kału, popłuczyn TTW czy BAL należy przechowywać w temperaturze 4 – 8° C aby zapobiec namnażaniu grzybów w próbce. Materiał powinien zostać opracowany w ciągu 24 godzin od pobrania.
W ramach badania izolowane są m.in. : Aspergiilus spp., Penicillum spp., Mucor spp., Alternaria spp.
Materiał do badania należy pobrać z tego samego miejsca na dwa jałowe i zwilżone solą fizjologiczną wymazy, z czego jeden umieścić w podłożu transportowym a drugi przesłać bez podłoża.Ze względu na możliwe zanieczyszczenia grzybami pleśniowymi, nie zaleca się pobierania wymazu ze skóry.
Popłuczyn z dróg oddechowych należy przechowywać w temperaturze 4 – 8°C aby zapobiec namnażaniu grzybów w próbce. Materiał powinien zostać opracowany w ciągu 24 godzin od pobrania.
Materiał należy pobrać na granicy zmian. Nie powinno się pobierać włosów z centrum, gdyż tam najszybciej postępują procesy odbudowy zdrowego włosa oraz znajdują się martwe komórki grzyba. Materiały do badań na dermatofity pobiera się od pacjentów przed rozpoczęciem terapii przeciwgrzybiczej lub po upływie co najmniej 4 tygodni od momentu zakończenia leczenia. W przypadku stosowania leków przeciwgrzybiczych o działaniu ogólnym, należy wziąć pod uwagę czas, który jest konieczny do eliminacji leku z organizmu i zależy od farmakokinetyki określonego preparatu.
Pobrany materiał należy umieścić w jałowym, suchym pojemniku, tak aby zapobiec kontaminacji drobnoustrojami / grzybami środowiskowymi.
Zalecamy przechowywać w temperaturze pokojowej i dostarczyć do laboratorium w ciągu maksymalnie 48 h.
| Hodowla | PCR |
| Wykrywa wyłącznie żywe dermatofity – zalecane do kontroli leczenia. | Wykrywa również martwe dermatofity. |
| Wzrost dermatofitów może być hamowany wzrostem grzybów pleśniowych. | Wyższa czułość (brak wpływu pleśni na wynik badania). |
| Możliwość wykrycia rzadkich gatunków dermatofitów. | Wykrywa najważniejsze gatunki (Trichophyton spp., Microsporum canis, Nannizia gypsea). |
| Niższy koszt, ale dłuższy czas oczekiwania na wynik (10-21 dni). | Wyższy koszt, ale wynik w ciągu 3 – 7 dni. |
Dermatofity takie jak np. Microsporum spp, Trichophyton to keratynofilne grzyby strzępkowe, które charakteryzują się m.in. powolnym tempem wzrostu. Pomimo stosowania podłóż hodowlanych, które mają za zadanie zahamowanie wzrostu pleśni, dalej istnieje możliwość uzyskania mieszanego wzrostu grzybów innych niż dermatofity. Taki wzrost wskazuje na kontaminację, w przypadku której może nie być możliwości potwierdzenia lub wykluczenia obecności w próbce grzybów patogennych metodą hodowlaną.
